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🧬 Génomique Clinique · IA Médicale

GenGI

Classification ACMG/AMP de variants génomiques propulsée par Nucleotide Transformer + Claude Sonnet — rapport clinique structuré en moins de 15 secondes.

< 15s
Analyse complète
28
Critères ACMG
5
Classes ACMG/AMP
NT-v2
50M paramètres
RGPD
Conforme
medflow-ai.fr/gengi/
🧬 GenGI · Genome Interpretation
EN LIGNE Claude Sonnet
3
🔴 Pathogènes
1
🟡 VUS
2
🟢 Bénins
6
Total variants
🔬 Variant Analysis 🧑‍⚕️ Patient View 📐 Architecture ⬇️ CSV
Pathogenicity Scoring — NT-v2 + ACMG/AMP
BRCA1
chr17:43094692 G›A
0.9423 🔴 PATH
BRCA2
chr13:32340300 A›T
0.9127 🔴 PATH
TP53
chr17:7675088 C›T
0.8712 🔴 PATH
PALB2
chr16:23614892 G›C
0.5432 🟡 VUS
BRCA1
chr17:43115726 T›C
0.1183 🟢 BEN
🧬
Genomic Risk Score (Δ-embedding NT-v2)
68% risque génomique global
3/6 variants pathogènes · conseil génétique recommandé
ÉLEVÉ
🔴 BRCA1/BRCA2 pathogènes — Syndrome HBOC confirmé — consultation oncogénétique urgente
Fonctionnement
Comment ça marche ?
4 étapes automatisées pour transformer vos variants bruts en rapport clinique ACMG/AMP structuré.
📤
01
Saisie des variants
Saisissez vos variants en format standard (chrN:pos:REF>ALT), importez un VCF annoté ou utilisez les cas d'exemple BRCA1/BRCA2/TP53 préconfigurés.
Texte libre VCF upload Format HGVS
🧬
02
Encoding NT-v2
Nucleotide Transformer v2 (50M) encode les séquences ADN REF et ALT (±128 bp de contexte). Le vecteur Δ = embed(alt) − embed(ref) capture le décalage fonctionnel dans l'espace d'embedding.
NT-v2-50M ±128 bp contexte 512-dim embedding
🤖
03
Scoring + Classification ACMG
Le TransformerEncoder GenGI prédit un score de pathogénicité ∈ [0,1]. Claude Sonnet applique les 28 critères ACMG/AMP (PVS1, PS1–4, PM1–6, PP1–5, BA1, BS1–4, BP1–7) pour la classification finale.
28 critères ACMG ClinVar / gnomAD CADD / SIFT
📋
04
Rapport + Vue Patient
Rapport structuré 3 vues (Variant Analysis, Patient View, Architecture). Score de risque génomique global, interprétation XAI, export CSV clinique et consultation génétique automatique si HBOC détecté.
Score global XAI attribution Export CSV
Algorithmes Scientifiques
Classification ACMG/AMP + IA
Chaque variant est analysé selon les guidelines ACMG/AMP 2015 (Richards et al.) enrichis par les recommandations ClinGen 2022 et les bases de données génomiques de référence.
Classification ACMG/AMP — 5 Classes de Pathogénicité (Richards et al., Genetics in Medicine 2015)
Classe Critères activés (exemples) Interprétation clinique
🔴 Pathogène PVS1 + PS1–PS4 combinés · variant perte de fonction dans gène haploinsuffisant Causal de la maladie — conseil génétique, implications familiales directes
🟠 Probablement Pathogène PS1 + PM1–PM3 · variant faux-sens au site fonctionnel critique Très probablement causal — gestion clinique similaire à "pathogène"
🟡 VUS (Signification Incertaine) PM2 + PP3 sans critères forts — fréquence faible gnomAD, prédicteurs in silico modérés Interprétation supplémentaire requise — ségrégation familiale recommandée
🟢 Probablement Bénin BS1 + BP4 · fréquence gnomAD > 1%, prédicteurs in silico bénins Probablement non pathogène — surveillance non recommandée
🔵 Bénin BA1 — fréquence gnomAD > 5% · polymorphisme commun confirmé Non pathogène — exclusion définitive de causalité
Nucleotide Transformer v2 — InstaDeepAI / EMBL-EBI (Dalla-Torre et al., bioRxiv 2023)

Modèle de fondation génomique pré-entraîné sur 3 202 génomes humains (1000 Genomes Project) + 850 génomes multi-espèces. Tokenisation 6-mers, embedding CLS 512-dim.

Δ = embed(alt) − embed(ref) [512-dim] GenGI TransformerEncoder: Linear(512 → 256) Pre-LN TransformerEncoder 2L × 4H LayerNorm → GELU → Dropout → Linear(1) → σ → score ∈ [0,1] XAI: gradient × Δ → per-variant importance
Score ≥ 0.8 → Pathogène probable (PVS/PS activés)
Score 0.5–0.8 → VUS / probablement pathogène
Score ≤ 0.2 → Bénin (BA1/BS1 activés si gnomAD > 1%)
Critères ACMG/AMP — 28 Règles de Classification (Richards et al., Genet Med 2015)

Les 28 critères ACMG sont combinés selon un système de points pondérés pour déterminer la classification finale. Chaque critère apporte des preuves de pathogénicité (PVS, PS, PM, PP) ou de bénignité (BA, BS, BP).

PVS1 — Perte de fonction (nonsense, frameshift, splice site ±1/2) dans gène haploinsuffisant
PS1/PS2 — Même AA que variant pathogène connu / de novo confirmé
PM1/PM2 — Hotspot mutagénique / absent de gnomAD (< 0.0001)
PP1–PP5 — Co-ségrégation familiale / prédicteurs in silico (CADD > 20, SIFT < 0.05)
BA1 — MAF gnomAD > 5% → bénin sans exception
Fréquence Allélique — gnomAD v4.1 + 1000 Genomes Project

Interrogation de la base gnomAD (730 947 génomes, 4 populations) pour extraire la fréquence allélique (MAF) et l'homozygotie. Critère PM2 activé si MAF < 0.0001 dans toutes les populations.

PM2 activé si MAF < 0.0001 (toutes pop.) BS1 activé si MAF > 0.001 (fréquence élevée) BA1 activé si MAF > 0.05 (polymorphisme) Populations : AFR · AMR · ASJ · EAS · FIN NFE · OTH · SAS · MID
gnomAD v4.1 : 730 947 génomes WGS/WES séquencés
Filtre qualité : gnomAD PASS + couverture ≥ 20×
Prédicteurs In Silico — CADD · SIFT · PolyPhen-2 · SpliceAI

Combinaison de 4 prédicteurs in silico pour l'évaluation de l'impact fonctionnel d'un variant faux-sens. PP3 activé si ≥ 2 concordants, BP4 si ≥ 2 prédisent bénin.

CADD Phred > 20 → impact modéré (PP3) CADD Phred > 30 → impact élevé (PP3 fort) SIFT < 0.05 → délétère PolyPhen-2 > 0.908 → probably_damaging SpliceAI > 0.5 → altération épissage (PM5)
PP3 activé si CADD > 20 + SIFT < 0.05 concordants
BP4 activé si tous prédicteurs indiquent bénin
SpliceAI ≥ 0.8 → critère quasi-PVS1 pour splice variants
🔒
Conformité RGPD · Données Génomiques Protégées
GenGI a été conçu dès l'origine pour respecter la réglementation européenne sur la protection des données de santé sensibles, incluant les données génomiques.
Aucune donnée nominative requise — seules les coordonnées génomiques (chrN:pos:REF>ALT) sont utilisées, jamais le nom ou l'identifiant du patient.
Zéro stockage persistant — les variants analysés et les rapports générés ne sont conservés sur aucun serveur entre les sessions.
Serveurs OVH France — hébergement 100% sur infrastructure française, soumis au droit européen (RGPD) et au référentiel HDS.
Transmission chiffrée HTTPS — les données transitent uniquement via des connexions TLS/SSL, sans interception possible.
Conformité bioéthique (Loi n°2021-1017) — l'outil est un aide à l'interprétation, non un dispositif de diagnostic. Aucune base de données de variants patients n'est constituée.
API Claude sécurisée — les requêtes à l'API Claude (Anthropic) ne contiennent aucun identifiant patient et ne sont pas réutilisées pour l'entraînement.
✅ RGPD ✅ CNIL ✅ OVH France ✅ HTTPS ✅ Zéro stockage ✅ Bioéthique FR
Couverture Génomique
Panels Géniques Couverts
GenGI analyse les variants dans les gènes pathogènes majeurs des principales indications cliniques.
🎗️
Cancers héréditaires
BRCA1, BRCA2, PALB2, ATM, TP53, CHEK2, CDH1, STK11, NF1, PTEN, MLH1, MSH2, MSH6, PMS2, APC, MUTYH
❤️
Cardiomyopathies
MYH7, MYBPC3, TNNT2, TNNI3, TPM1, MYL2, MYL3, ACTC1, SCN5A, LMNA, PLN, RBM20
🫀
Aortopathies / Marfan
FBN1, FBN2, TGFBR1, TGFBR2, SMAD3, ACTA2, MYH11, COL3A1, ELN, SKI, EFEMP2, FLNA
🫁
Pneumopathies rares
CFTR (FC), SFTPC, SFTPB, ABCA3, NKX2-1, TMEM173, SLC7A7, HPS1, DCLRE1C, RAG1, RAG2
🧠
Neuromusculaires
DMD, SMN1, SMN2, DMPK, FSHMD1A, ATP7B (Wilson), HFE, HEXA, GBA, LRRK2, PARK2
💊
Pharmacogénomique
CYP2D6, CYP2C19, CYP2C9, DPYD (5-FU), TPMT (azathioprine), G6PD, VKORC1, NAT2, UGT1A1
🫘
Maladies rénales
PKD1, PKD2, PKHD1, COL4A3/A4/A5 (Alport), NPHS1, NPHS2, INF2, UMOD, DNAJB11
🩸
Hémopathies héréditaires
HBB, HBA1, HBA2 (thalassémies), F8, F9 (hémophilie), VWF, F2, F5, JAK2, CALR, MPL
🔬
Déficits immunitaires
BTK (Bruton), ADA, SCID (IL2RG), DOCK8, PIK3CD, PIK3R1, NEMO, STAT3, RAD51C, FANC
Gènes Actionables ACMG Secondary Findings v3.2 — 81 Gènes
BRCA1 · BRCA2 TP53 (Li-Fraumeni) PALB2 · CHEK2 MLH1 · MSH2 (Lynch) APC (FAP) RET · MEN1 · MEN2 VHL · SDHA/B/C/D MYH7 · MYBPC3 SCN5A · KCNQ1 LMNA · PLN FBN1 (Marfan) COL3A1 (Ehlers-Danlos) LDLR · APOB · PCSK9 ATP7B (Wilson) HFE (hémochromatose) CYP21A2 (hyperplasie) DPYD · TPMT · G6PD OTC · PKU (PAH) MUTYH · PTEN · STK11 NF2 · TSC1 · TSC2
Pour les Généticiens
Pourquoi GenGI ?
🧬
Nucleotide Transformer intégré
NT-v2-50M (InstaDeepAI / EMBL-EBI) encode le contexte ADN brut ±128 bp. Le delta-embedding capture la perturbation fonctionnelle réelle du variant dans l'espace d'embedding.
📋
28 critères ACMG/AMP automatisés
PVS1, PS1–4, PM1–6, PP1–5, BA1, BS1–4, BP1–7 appliqués automatiquement. Chaque critère activé est détaillé avec la source de preuve (ClinVar, gnomAD, SIFT, PolyPhen, SpliceAI).
Analyse batch VCF
Importez directement un fichier VCF annoté. GenGI parse automatiquement tous les SNV et génère un score par variant. Export CSV structuré prêt pour le dossier patient.
🔍
XAI — Explainability intégrée
Attribution gradient × Δ pour chaque variant. Visualisation des contributions par variant au score de risque global — interprétable par les généticiens et biologistes médicaux.
🎯
Gènes actionables ACMG SF3.2
Détection automatique des variants dans les 81 gènes ACMG SF3.2. Alerte clinique immédiate en cas de variant pathogène dans un gène actionable (BRCA1/2, Lynch, cardiomyopathie…).
🔒
Données non stockées
Aucune donnée génomique patient conservée. Analyse temps réel, aucune persistance entre sessions. Conformité RGPD et exigences bioéthique française (Loi n°2021-1017).
Base Scientifique
Références Scientifiques
01
Richards S, et al. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: a joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology. Genet Med. 2015;17(5):405–424.
02
Dalla-Torre H, et al. The Nucleotide Transformer: Building and Evaluating Robust Foundation Models for Human Genomics. bioRxiv. 2023. doi:10.1101/2023.01.11.523679.
03
Landrum MJ, et al. ClinVar: improving access to variant interpretations and supporting evidence. Nucleic Acids Res. 2018;46(D1):D1062–D1067.
04
Chen S, et al. (gnomAD Consortium). A genomic mutational constraint map using variation in 76,156 human genomes. Nature. 2022;625:92–100.
05
Rentzsch P, et al. CADD: predicting the deleteriousness of variants throughout the human genome. Nucleic Acids Res. 2019;47(D1):D886–D894.
06
Kumar P, Henikoff S, Ng PC. Predicting the effects of coding non-synonymous variants on protein function using the SIFT algorithm. Nat Protoc. 2009;4:1073–1081.
07
Adzhubei I, et al. Predicting functional effect of human missense mutations using PolyPhen-2. Curr Protoc Hum Genet. 2013;Chapter 7:Unit7.20.
08
Jaganathan K, et al. Predicting Splicing from Primary Sequence with Deep Learning. Cell. 2019;176(3):535–548. (SpliceAI)
09
Miller DT, et al. (ClinGen). ACMG SF v3.2 list for reporting of secondary findings in clinical exome and genome sequencing: a policy statement of the American College of Medical Genetics and Genomics. Genet Med. 2023;25(8):100866.
10
Zhou J, et al. DNABERT-2: Efficient Foundation Model and Benchmark For Multi-Species Genome. arXiv. 2023:2306.15006.
11
Bycroft C, et al. The UK Biobank resource with deep phenotyping and genomic data. Nature. 2018;562:203–209.
12
Kuchenbaecker KB, et al. (BRCA1 and BRCA2 Cohort Consortium). Risks of Breast, Ovarian, and Contralateral Breast Cancer for BRCA1 and BRCA2 Mutation Carriers. JAMA. 2017;317(23):2402–2416.
🧬

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Développé par Dr. Mamadou Lamine Tall, PhD en bio-informatique & data science. Google Scholar · CV complet. Contenu revu en septembre 2026.

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